Flétrissement bactérien des cucurbitacées

Vue d’ensemble du flétrissement bactérien

Le flétrissement bactérien se produit principalement sur les concombres et les melons, mais peut également être un problème sur les courges et les citrouilles. La maladie est causée par la bactérie Erwinia tracheiphila.

Signes et symptômes du flétrissement bactérien

Les symptômes varient sur les différentes espèces hôtes, mais généralement les feuilles prennent une couleur vert terne, et un flétrissement progressif des feuilles latérales se produit. L’agent pathogène se déplace dans la tige principale, bouchant les tissus vasculaires, et finit par provoquer le flétrissement et la mort de plantes entières.

Le « test de la ficelle » peut être utile pour identifier la maladie. Commencez par couper une tige flétrie. Poussez les deux extrémités coupées ensemble et écartez-les lentement. Si le flétrissement bactérien est présent, une ficelle d’exsudat bactérien devrait apparaître, reliant les deux extrémités coupées alors que vous les écartez lentement. Une autre technique de diagnostic consiste à placer l’extrémité coupée dans un verre d’eau. Si des bactéries sont présentes, elles s’écouleront dans l’eau et donneront un aspect trouble à proximité de l’extrémité coupée. Les bactéries sont microscopiques, il faut donc les regarder attentivement. Si les morceaux de tige sont déjà morts, ces techniques ne sont pas utiles pour diagnostiquer la maladie.

Symptômes du flétrissement bactérien

Cycle pathologique du flétrissement bactérien

La maladie est causée par la bactérie Erwinia tracheiphila et est étroitement associée aux chrysomèles du concombre. La bactérie passe l’hiver dans les chrysomèles du concombre. Deux espèces, les chrysomèles du concombre rayées et les chrysomèles du concombre tachetées, transportent la bactérie d’une plante à l’autre, et l’infection se produit souvent par les blessures causées par les chrysomèles. Les coléoptères transmettent la maladie lorsqu’ils se nourrissent des jeunes feuilles au printemps. Une fois à l’intérieur de la plante, la bactérie se multiplie et se propage rapidement. La maladie est déplacée de plante en plante par les coléoptères. La maladie est généralement observée pour la première fois sur les bords des plantations, là où les coléoptères se posent en premier.

Type d’échantillon nécessaire pour le diagnostic et la confirmation

La clinique de diagnostic des plantes de l’Université d’État de l’Iowa & peut vous aider à enquêter et à confirmer si votre plante est atteinte de cette maladie. Veuillez consulter notre site Web pour les formulaires actuels, les frais et les instructions sur la collecte et l’emballage des échantillons. Les coordonnées du laboratoire de diagnostic de chaque État pour les résidents américains sont disponibles sur le site Web du NPDN. Si vous avez un échantillon provenant de l’extérieur de l’Iowa, veuillez NE PAS le soumettre à la clinique de diagnostic des insectes des plantes & sans nous contacter.

Gestion du flétrissement bactérien

La lutte contre la maladie dépend du contrôle de la chrysomèle du concombre. Il existe également des variétés disponibles avec une résistance au flétrissement bactérien. N’oubliez pas que d’autres maladies, insectes, pesticides ou facteurs environnementaux peuvent provoquer le flétrissement des feuilles et la mort des vignes. Un diagnostic précis est important pour choisir les mesures de lutte appropriées. La plupart des producteurs ont recours aux insecticides, mais la lutte chimique peut nécessiter de nombreuses applications par an, ce qui est coûteux et peut également endommager les insectes non ciblés, notamment les abeilles qui pollinisent les cucurbitacées. Pour plus d’informations sur l’utilisation d’insecticides pour la production commerciale, voir le guide Midwest Vegetable Production Guide for Commercial Growers disponible sur https://store.extension.iastate.edu/Product/1774

L’utilisation de couvertures de rangs peut aider à supprimer la transmission du flétrissement bactérien en excluant l’insecte vecteur à un moment critique (10 jours après l’anthèse). L’efficacité dépend de l’effectif de la population du coléoptère.

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