Maladies des taches foliaires des cultures floricoles causées par des champignons et des bactéries
Les maladies des taches foliaires causées par des champignons et des bactéries sont parmi les problèmes les plus couramment rencontrés par les producteurs de plantes ornementales. De nombreuses cultures différentes sont affectées par des espèces des genres de champignons Alternaria, Cercospora, Colletotrichum (anthracnose) et Myrothecium. Les taches foliaires bactériennes sont le plus souvent causées par des pathovars de Pseudomonas syringae et Xanthomonas campestris. Les espèces susmentionnées ne sont qu’un petit sous-ensemble des nombreux agents pathogènes qui peuvent causer des maladies des taches foliaires. Les mildious (Downy Mildew Diseases of Ornamental Plants) et les maladies de la rouille (Rust Diseases of Ornamental Plants) font l’objet d’autres fiches.
Pathogènes fongiques courants des taches foliaires
Alternaria alternata
Ce champignon a une large gamme d’hôtes, y compris le géranium, les hybrides de Dahlia, Gerbera jamesonii (marguerite africaine), les espèces de Begonia, Gardenia augusta, Cineraria, Verbena, violette africaine, Hibiscus et Vinca. De petites lésions (taches) imbibées d’eau apparaissent d’abord sur les feuilles inférieures, plus anciennes. Au fur et à mesure que les lésions mûrissent, elles s’enfoncent et deviennent brunes, parfois avec un halo jaune. Les lésions peuvent avoir ou non l’apparence d’anneaux concentriques. Dans les cas graves, les lésions peuvent coalescer, entraînant la chlorose et la chute des feuilles. Les taches foliaires d’Alternaria sont favorisées par des conditions qui stressent les plantes hôtes comme des températures élevées ou basses ou des boîtes fermées pendant l’expédition.
Espèces de Cercospora
Des taches foliaires de Cercospora ont été signalées occasionnellement sur des hybrides de Dahlia, Poinsettia, Lisianthus, Gardenia augusta , Gerbera jamesonii (marguerite africaine), Hibiscus, pensée, Kalanchoe, Verbena et géranium. Les lésions apparaissent d’abord sous la forme de taches vertes claires et enfoncées qui deviennent grises et foncent avec la production de spores. Elles peuvent également avoir une bordure violette et sembler être surélevées au centre. Les lésions peuvent coalescer en zones nécrotiques en forme de V qui peuvent être confondues avec la brûlure bactérienne. Les feuilles fortement infectées peuvent tomber.
Espèces de Colletotrichum (anthracnose )
Les maladies de l’anthracnose sont causées par des espèces de Colletotrichum et Gloeosporium. De nombreuses plantes sont sensibles, notamment l’Anemone coronaria, les espèces de bégonias, le Vinca, le Cyclamen persicum, les hybrides de dahlia, le poinsettia, le Gardenia augusta, l’hibiscus, le géranium, les hybrides de primevères, le Ranunculus, la verveine et le Gloxinia. Sur les anémones cultivées à l’extérieur, Colletotrichum provoque une maladie grave connue sous le nom d’enroulement des feuilles. Les bords des feuilles s’enroulent vers le bas et les pétioles et les pédicelles deviennent exceptionnellement tordus.
Les distorsions de croissance peuvent être suivies par le dépérissement des pousses, le fendillement des tiges et l’incapacité des jeunes feuilles à se développer. De petites lésions brunes peuvent être observées sur les pétioles et les pédicelles. L’anthracnose sur Cyclamen provoque de petites taches foliaires rondes et brunes, un rabougrissement, une déformation et une nécrose des pétioles et des pédicelles immatures au centre de la plante. Une décoloration vasculaire est évidente dans les pétioles et les cormes infectés. Sur d’autres hôtes, Colletotrichum se présente principalement sous forme de petites lésions rondes sur les feuilles et les pétales qui fusionnent pour former de grandes zones de tissu nécrotique. Les feuilles et les pétales peuvent devenir complètement flétris. Un signe diagnostique de l’anthracnose est la présence de sporulation rose à orange suintant des lésions lors d’une inspection minutieuse. Les maladies de l’anthracnose peuvent se propager sur des graines ou des rhizomes infectés, en tant que saprophyte dans les tissus blessés, ou provenir de plantes indigènes infectées.
Myrothecium roridum
Myrothecium est un saprophyte commun, présent dans le sol, considéré comme un pathogène faible qui envahit les tissus végétaux blessés ou stressés dans des conditions environnementales favorables. Il a été signalé sur Gardenia augusta , New Guinea Impatiens, les espèces de Begonia, et Gloxinia, et peut causer de graves pertes dans la pensée. Les symptômes sur la pensée comprennent la chlorose, le rabougrissement, la faible vigueur de la plante, le flétrissement et l’effondrement de la plante. Il peut également provoquer la pourriture des racines et du collet sur certaines espèces de plantes, et peut entraîner la perte de boutures lors de la propagation. Les lésions sont souvent en forme de cible, avec un centre brun clair et des bords foncés. Des sporodochies (structures produisant des spores) distinctives, vert foncé à noir, bordées d’hyphes blanches, se forment dans les lésions. La maladie est favorisée par des températures comprises entre 65° et 68° F, une humidité élevée, des blessures aux plantes et une fertilisation excessive. La promotion de la formation rapide du périderme de la plaie par des températures élevées peut aider à gérer le pathogène.
Maladies bactériennes des taches foliaires
Les bactéries sont des organismes microscopiques unicellulaires qui se reproduisent rapidement et causent une variété de maladies des plantes, y compris les taches foliaires, la pourriture de la tige, les pourritures des racines, les galles, le flétrissement, le mildiou et les chancres. Ils survivent dans les plantes infectées, les débris de plantes infectées, sur ou dans les semences, et dans quelques cas, dans le sol infesté. Elles se déplacent facilement du sol aux feuilles et des feuilles aux feuilles par les éclaboussures d’eau, les outils et les mains des travailleurs. La plupart des bactéries ont besoin d’une blessure ou d’une entrée naturelle pour infecter les plantes et se développent dans des environnements chauds et humides. La meilleure façon de prévenir les maladies bactériennes est d’acheter des plantes certifiées exemptes d’agents pathogènes par le processus d’indexation des cultures. Des morceaux de tissu végétal sont incubés dans une solution nutritive et si aucun agent pathogène ne se développe après avoir répété la procédure 2 ou 3 fois, la plante est considérée comme exempte d’agents pathogènes. Les procédures de manipulation de la terre et des débris végétaux infectés doivent être séparées des opérations de manipulation des plantes.
Pseudomonas syringae
P. syringae a une large gamme d’hôtes, y compris les espèces ligneuses, les légumes, les graminées et les plantes ornementales herbacées ; cependant, il existe de nombreuses souches (pathovars) de la bactérie, et celles-ci sont généralement très spécifiques à une ou un petit groupe de plantes hôtes. Les hôtes signalés sont le géranium, les hybrides de dahlia, l’hibiscus, l’impatiens walleriana et l’impatiens de Nouvelle-Guinée. Les symptômes de la maladie sont des lésions imbibées d’eau qui deviennent marron foncé, noires ou brunes. Les tissus infectés deviennent papuleux et se fissurent lors de l’expansion de la feuille, ce qui entraîne une déformation des feuilles. Les lésions sont souvent accompagnées d’un jaunissement des tissus adjacents et de la mort des feuilles sans flétrissement. P. syringae peut être transmis par les graines dans certaines cultures et est favorisé par les basses températures.
Pseudomonas cichorii
P. cichorii provoque des symptômes similaires à ceux de P. syringae sur Gerbera jamesonii, Hibiscus, Impatiens wallerana, Cyclamen persicum, primevère, Vinca chrysanthème, géranium des fleuristes et de nombreuses autres cultures ornementales et plantes à feuillage. Cette bactérie est favorisée par les températures élevées et peut survivre de manière épiphyte (sur le dessus des plantes) sur les chrysanthèmes et d’autres hôtes, ce qui permet une dispersion étendue sur le matériel végétal.
Xanthomonas campestris
Comme P. syringae , X. campestris affecte de nombreuses espèces végétales, mais existe sous forme de pathovars qui sont spécifiques à l’hôte. Les hôtes importants comprennent les espèces de bégonias, le poinsettia et le Capsicum annuum (poivre d’ornement). Sur les bégonias, les symptômes varient selon l’espèce ou le croisement interspécifique. Les bégonias à cire et les bégonias tubéreux (non stop) présentent de petites lésions circulaires avec un halo translucide, une chute des feuilles et un flétrissement si la bactérie devient systémique. Les bégonias Rieger présentent de grandes lésions brunes en forme de coin, souvent au bord des feuilles, qui présentent un pointillé caractéristique. La sensibilité à cette maladie varie selon les espèces, les cultivars et les hybrides de bégonias. Sur Poinsettia, les symptômes de X. campestris apparaissent d’abord sous la forme de lésions grises à brunes, imbibées d’eau, sur la face inférieure des feuilles. Au fur et à mesure que les lésions s’agrandissent, elles deviennent apparentes sur le dessus des feuilles sous forme de lésions de couleur brune à rouille, avec ou sans halo vert pâle. Les lésions peuvent s’unir pour former de grandes zones de tissus brûlés et les feuilles peuvent jaunir et tomber. Cette maladie se propage rapidement. La bactérie existe probablement de manière épiphyte, ce qui fait que les boutures colonisées et non symptomatiques sont la source des épidémies. Les transplants de légumes, y compris la tomate, le poivron et les cultures de choux sont également sensibles aux pathovars de X. campestris.
Gestion des maladies des taches foliaires
De bonnes pratiques d’hygiène et la réduction de l’humidité dans la serre et autour des plantes sont essentielles à la gestion des maladies des taches foliaires.
- Achetez des plantes d’une source réputée.
- Toujours vérifier soigneusement les plantes entrantes pour les signes et les symptômes de la maladie, et ne pas apporter de plantes malades dans la serre.
- Quoi que soit le pathogène en cause, la gestion devrait impliquer la diminution de l’humidité relative dans la serre et dans le couvert végétal.
- Minimiser l’humidité des feuilles en arrosant tôt dans la journée ou en sub-irrigant. Éliminez l’arrosage par le haut si possible.
- Assurez une bonne circulation de l’air dans le couvert végétal en espaçant correctement les plantes et en utilisant des ventilateurs pour fournir un flux d’air horizontal.
- Enlevez et détruisez toute plante fortement infestée.
- Les débris végétaux malades doivent être rapidement retirés de la zone de culture. Les bancs doivent être nettoyés avec un désinfectant pour lits de laboratoire.
- Les travailleurs doivent se laver les mains fréquemment et immédiatement après avoir manipulé des plantes ou de la terre infectées.
- Éviter de manipuler des plantes lorsqu’elles sont humides.
- Les outils doivent être fréquemment désinfectés.
- Cultiver des cultivars résistants lorsqu’ils sont disponibles.
- Ne réutilisez pas les milieux de culture ou les pots.
- Ne suspendez pas les paniers directement au-dessus des bancs remplis de plantes en pot.
- La nutrition peut affecter la sensibilité aux maladies ; évitez les excès ou les insuffisances de fertilisation.
- Les fongicides sont mieux utilisés de manière préventive. Il existe de nombreux fongicides à large spectre avec une large clairance pour les cultures qui contrôleront la plupart des taches foliaires fongiques. Il s’agit notamment de l’axoystrobine, du chlorothalonil, du mancozèbe, du mylobutantil, de la pyrclostrobine, du thiophanate-méthyle et des produits à base de cuivre. Suivez attentivement le mode d’emploi figurant sur l’étiquette.
- Les bactéricides tels que les produits à base de cuivre ne peuvent pas guérir les plantes malades, mais peuvent aider à prévenir l’infection des plantes non infectées.
Notez que si les techniques de gestion culturelle des taches foliaires fongiques et bactériennes sont similaires, la gestion chimique est très différente. En outre, les taches foliaires peuvent également être causées par des virus. Lors des choix de gestion, il est essentiel d’avoir un diagnostic précis, qui peut être difficile à obtenir sans l’utilisation d’un microscope. Des échantillons peuvent être envoyés à un laboratoire de diagnostic pour établir un diagnostic. Pour des informations sur le laboratoire de diagnostic des plantes de l’Université du Massachusetts, veuillez consulter http://ag.umass.edu/services/plant-diagnostics-laboratory.
- Pearce, Mila. 2005. Les maladies de la pensée dans le paysage. Collège des sciences agricoles et environnementales de l’Université de Géorgie. UGA Extension publications
- Daughtrey, M.L. Wick, R.L., et J.L. Peterson. 1995. Compendium des maladies des plantes en pot à fleurs. APS Press. St. Paul , MN . 90 pp.
- Moorman, Gary. 2005. Bacterial Diseases of Ornamental Plants. Penn State University Cooperative Extension.
Photos du Dr Robert L. Wick
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